商品详情：
产品简介：
植物基因组DNA提取试剂盒（磁珠法）适用于从植物样本中快速、高效地提取 DNA。提取过程采用超顺磁性微球，无需离心操作；使用预制的缓冲液，可直接进行提取，且可根据加入的样本量来调整反应体系。本产品既可以手动进行少量样品的提取，也适合于用自动化工作站进行高通量操作。提取的产物可用于酶切、PCR 扩增、检测等后续实验。
产品组分：
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产品编号 |
产品名称 |
规格 |
保存条件 |
备注 |
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BL5640A-1 |
磁珠悬液 |
1.5ml |
4℃ |
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BL5640A-2 |
裂解液（Buffer LB） |
60ml |
4℃ |
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BL5640A-3 |
RNase A |
1.5ml |
-20℃ |
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BL5640A-4 |
结合液（Buffer BB） |
60ml |
4℃ |
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BL5640A-5 |
洗涤液1（Buffer W1） |
120ml |
4℃ |
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BL5640A-6 |
洗涤液2（Buffer W2） |
24ml |
4℃ |
首次使用前加入96ml无水乙醇 |
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BL5640A-7 |
洗脱液（Buffer EB） |
10ml |
4℃ |
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BL5640A-8 |
蛋白酶 K 溶液（Proteinase K） |
1.5ml |
-20℃ |
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使用方法：
- 植物样本研磨（以 100mg 样本量为例）
取足量新鲜植物样本或冻存样本，加入液氮充分研磨。
2、裂解
向1.5ml离心管中加入50-100mg研磨的植物样本，依次加入600μl Buffer LB、15μl RNase A溶液、15μl Proteinase K，调整合适的转速漩涡振荡 1min，充分混合后室温静置 15min。13000 rpm 离心 5min，转移 300μl上清至新的 1.5ml 离心管中。
3、结合
向上述离心管中依次加入600μl Buffer BB、15μl磁珠悬液，震荡混匀30s，室温结合5min，期间颠倒混匀两次，然后将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清，用移液器移去上清液并取下离心管。
注意：此步骤磁性分离时间应不少于2 min。
4、洗涤 I
向 1.5ml 离心管中加入 600μl Buffer W1，震荡混匀 30s，将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清，用移液器移去上清液并取下离心管。再重复此操作 1 次。
5、洗涤 II
将 1.5ml 离心管从磁力架上取下，加入 600μl Buffer W2，涡旋震荡 30s，将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清，用移液器移去上清液并取下离心管。再重复此操作 1 次。
6、干燥
保持离心管于磁性分离器上，将其置于室温中风干至磁珠表面无明显光泽（10 min），取下离心管。
注意：干燥过程中若发现反应管中有液体残留时，可用小量程移液器吸弃液体。
7、洗脱
加入50~100μl 65℃预热的Buffer EB，震荡混匀30s，于 65℃加热 5 min 后，将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清，转移上清液至新的 1.5ml 离心管中，此即为纯化得到的植物 DNA，可保存于-20℃。
注意事项：
- 提取效果与样本质量有关，应避免对样本进行反复冻融。
- 应避免对磁珠进行冷冻、离心等操作。
- 磁珠取用前应充分重悬均匀。
- 磁珠干燥前，应用移液器吸尽洗涤液。
- 应避免磁珠过度干燥，否则会严重降低核酸洗脱效率。
- 建议使用质量较好的离心管和移液枪吸头，避免因粘附磁珠而造成损失。
- 试剂出现沉淀，可在 50℃水浴中重新溶解，摇匀后使用。
- 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。
- 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
保存条件：
-20℃保存，有效期 1 年。
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